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57 人阅读发布时间:2025-12-04 11:43

细胞免疫荧光(Immunofluorescence, IF)是科研中最常用的可视化技术之一 —— 通过抗原抗体特异性结合,让目标蛋白带上 “荧光标签”,再借助激光共聚焦显微镜捕捉信号,就能清晰看到蛋白在细胞内的定位、分布甚至相互作用。而蔡司 LSM 980作为激光共聚焦系统,凭借超高分辨率和灵活的参数调节,能让实验结果更精准、图像更精美。本文就带大家从 “样本制备” 到 “图像采集” 全流程拆解,再用实战案例帮你快速上手!




细胞免疫荧光(IF)技术的核心的是抗原 - 抗体的特异性结合反应 —— 用荧光素标记的抗体作为 “探针”,精准识别细胞内目标抗原,再通过荧光信号可视化呈现抗原的定位、分布及表达水平。该技术兼具高特异性与空间分辨率,是蛋白定位研究、疾病标志物检测的核心手段,也是灵赋拓普细胞技术平台的核心支撑技术之一。
将荧光素直接标记在特异性一抗(即识别目标抗原的抗体)上。实验时,用这种标记好的一抗直接与样本中的目标抗原结合,洗涤后即可在显微镜下观察荧光信号。其优点是流程简单快捷、背景干扰低;而缺点则是灵敏度相对较低、灵活性差、抗体选择有限。

使用未标记的特异性一抗先与抗原结合,再用荧光素标记的二抗去识别并结合一抗,二抗是针对一抗物种来源(如兔、鼠)的抗体,最终通过二抗上的荧光素产生信号。其优点是灵敏度高、抗体选择范围广,缺点是流程较长、背景风险较高。

1、状态良好、无污染的细胞(实验结果可靠的前提)
2、4% 多聚甲醛(PFA)固定液(室温处理,避免冷处理细胞,导致细胞皱缩)
3、0.1%-0.5% Triton X-100(透化剂)
4、PBS(磷酸盐缓冲液)及PBST(磷酸盐缓冲液+ Tween-20)
5、封闭液(1%-5% BSA,阻断非特异性结合)
6、一抗(针对目标蛋白的特异性抗体,优先选择单克隆抗体,避免非特异性)
7、荧光标记的二抗(如 Alexa Fluor 488、Alexa Fluor 594等)
8、DAPI 或 Hoechst(细胞核染色剂)
9、抗荧光淬灭封片剂
1、细胞准备
◆ 将细胞接种在含爬片的培养板中,培养至 70% 融合度。(也可用玻璃培养皿进行样品制备;(尽量避免使用塑料培养器皿进行样品制备,而导致成像扭曲、像差和背景杂光,无法获得高分辨率、高清晰度的图像)。
2、清洗及固定(防止目标蛋白在后续步骤中扩散、流失或降解)
◆ 去除培养基,沿器皿侧壁加入PBS润洗细胞2-3次,请勿用PBS直冲细胞,以免造成细胞脱落;
◆ 加入 4% PFA 固定液,室温固定 10-20 分钟;
◆ 固定好的样片用PBS清洗3次,每次5分钟。
3、通透(抗体能够进入细胞内部)
◆ 用 0.1%-0.5% TritonX-100 溶液透化细胞,室温孵育 10 分钟。通透时间通常为5 ~ 20 min。(该步骤可选;通透步骤会破坏细胞膜,细胞膜表面抗原不适合选择通透实验)。
◆ 通透后的样本用PBS清洗3次,每次5分钟;
4、封闭(减少一抗/二抗与非特异性抗原位点的结合,减少背景染色)
◆ 加入1%-5% 的 BSA(牛血清白蛋白)溶液,室温孵育 60 分钟;
◆ 封闭结束可直接孵育一抗,无需再用PBS洗涤,目的是维持封闭环境,防止非特异性结合位点重新暴露。
5、一抗孵育(识别目的蛋白)
◆ 弃封闭液,加入含1% BSA的PBS配制的一抗,24孔板每孔可加入200-250ul,室温孵育2h,或4℃保湿过夜孵育;
◆ 孵育结束后,用 PBS 洗涤 3 次,每次 5 分钟。
注:孵育的一抗可以重复利用,收集到干净的离心管,低温避光保存即可。
6、荧光二抗孵育(识别一抗,二抗上带有荧光团用于后续的荧光显微镜观察)
◆ 采用抗体工作液稀释荧光标记的二抗,细胞加入二抗溶液,室温避光孵育1小时;
◆ 孵育后,用PBST(0.1%Tween)清洗样片,清洗3次,每次5分钟;(PBST是使用可以更好的去除未结合的二抗,可以降低背景信号)。
7、细胞核染色(为目的蛋白做定位参照及反应细胞状态)
◆ 10ml PBS加入1ul DPAI原液,室温孵育 5-10 分钟,避光操作;
◆ 用 PBS 再次洗涤 2-3 次,每次 5 分钟。
8、封片(防止荧光淬灭)
◆ 在载玻片上滴加适量封片剂,采用弯头尖镊将细胞爬片倒扣在载玻片上,使细胞接触到封片剂;
◆ 小心覆盖盖玻片,避免形成气泡;
◆ 封片后,样本可以在避光低温条件下保存,建议尽快进行显微镜观察。
9、荧光显微镜观察(目的蛋白可视化)
◆根据不同的荧光染料,选择不同波段的激发光,DAPI为蓝色,488通道为绿色。

注意事项
◆ 信号弱或无:一抗失效/稀释过度;固定过度(PFA固定时间太长);通透不足;二抗不匹配(一抗是鼠源,二抗则需要是抗鼠的)。
◆ 背景太高:封闭不充分;一抗浓度过高或非特异性结合;洗涤不彻底;二抗浓度过高;样本干燥等。
◆ 非特异性斑点:固定时产生沉淀;抗体聚集(使用前离心);细胞状态差,有死细胞。
◆ 定位不对:固定不当导致抗原移位(膜蛋白不需要固定步骤);错误使用甲醇固定膜蛋白。
◆ 荧光淬灭快:未使用防淬灭封片剂;曝光时间过长;封片时有气泡。
设备选择:蔡司 LSM800激光共聚焦显微镜(灵赋拓普主力机型),支持多通道荧光成像
参数设置:根据荧光素类型匹配激发波长(FITC 488nm、Cy3 555nm、DAPI 405nm),调节激光强度与增益,避免信号饱和或背景噪声
物镜选择:低倍镜(10×/20×)定位样本,高倍镜(63× 油镜)获取清晰图像
样本放置:将封片后的载玻片平稳置于载物台,避免倾斜导致焦距偏移

通道设置:分别设置荧光通道与明场通道,调节通道顺序避免串色

对焦与扫描:手动对焦至目标区域,选择合适扫描分辨率(512×512 或 1024×1024),开启 Z-stack 模式可获取三维成像数据



数据保存:以 TIFF 格式保存原始图像,保留实验参数日志便于追溯(适合论文投稿)


成像前需预热仪器 30min,确保激光稳定性;
油镜使用后及时清洁,避免污染影响后续实验;
若出现荧光信号弱,可适当延长扫描时间或提高激光强度(需避免样本损伤)。
✅ 硬件保障:配备蔡司 LSM800激光共聚焦显微镜、标准化细胞培养室,试剂均选用进口验证产品。
✅ 技术优势:基于千余例实验数据优化的标准化流程,抗体浓度梯度验证、荧光信号质控等关键环节全程可追溯。
✅ 服务灵活:支持基础成像、定量分析、三维重构等定制化需求,从科研项目到临床前研究均可适配。
无论是蛋白定位分析、细胞表型鉴定,还是标志物共定位研究,灵赋拓普都能以专业的技术实力、严格的质控体系,为您的科研成果保驾护航。如需解锁更多实验技巧或咨询服务详情,欢迎直接在微信公众号后台留言交流~
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关于灵赋拓普
深圳灵赋拓普生物科技有限公司(简称灵赋拓普)成立于2015年,是一家专注动物科研,服务临床前研究与评价的创新型CRO企业。公司以动物模型为核心,同时开展细胞、病理、蛋白、分子、生化、行为学等一站式服务,赋能生命科学和生物医药研究。灵赋拓普在深圳南山、光明、坪山及广州拥有研发基地及实验动物中心,提供医疗器械评价、大小动物模型开发、药物筛选与评价、动物饲养等临床前CRO服务。先后获得国家高新技术企业、专精特新企业、质量管理体系等荣誉认证。公司具有核心研发和专业技术团队,致力于成为全国动物科研服务领跑品牌,实现“愿天下没有难治的疾病”的美好愿景。