大小鼠药代实操手册：从给药到采血，手把手教你避开5个要点

 静脉注射（IV，尾静脉最常用）

小鼠必须充分加温扩血管：用红外灯或42℃水浴袋热敷尾巴1-2分钟，血管呈粉红色再扎。

进针点选尾侧静脉（左右两侧），30G胰岛素针，针尖斜面朝上，与尾约10-15°角进针。

标志：推注时阻力小，药液走行一段后消失。若局部发白鼓包 → 失败，数据不能用。

推注速度：10秒左右推完（体积5-10 mL/kg），太快会一过性低血压/死亡。

 口服灌胃（PO）

用弯头灌胃针（小鼠20-22G，大鼠16-18G），针头长度按动物大小预量：小鼠约2.5-3 cm，大鼠约5-6 cm。

关键手法：小鼠头颈与身体成一直线，针沿上颚入，过喉头时有“落空感”，进针无阻力。

 采血通用原则

全血采集后立即4℃离心（3000-4000 rpm，10 min），取上清血浆，1小时内离心完毕，否则药物降解。

血浆分离后：分装到标记好的离心管，-80℃保存（短期可-20℃，但推荐-80℃）。

避光药物：全程使用棕色管或在暗处操作（如硝苯地平、氯丙嗪等光敏药物）。

溶血样本：肉眼可见红色血浆 → 作废，必须重采（溶血会释放胞内酶和药物结合蛋白）。

密集采血期（前 30 分钟）：每个点误差 不超过≤30 秒 ，建议 2 人操作：1人固定动物+采血，1人计时记录；

中后期（1–8 小时）：误差可放宽至 2–5 分钟，但仍需准确记录实际采血时间（用于后续PK计算）；

小技巧：提前按时间点 / 动物编号标记离心管，按顺序摆冰盒，采一个走一个，不慌乱。

IV推注后拔针出血 → 用干棉球轻压尾静脉进针点30秒，否则药液随血流出，剂量不准；

小鼠眼眶采血后死亡 → 进针深度过深（＞5 mm）损伤视神经或脑组织。控制深度3-4 mm，旋转进针而非直捅；

血浆反复冻融 → 每次冻融降解约10-30%，全程最多冻融1次，分装成单次用量小管。